子宮內(nèi)膜異位癥模型實驗介紹：

常用動物：大鼠，小鼠，性成熟，8-10周齡

適應性飼養(yǎng)后，用消毒棉拭子旋轉(zhuǎn)插入小鼠陰道內(nèi)，并在陰道內(nèi)輕輕轉(zhuǎn)動幾下后取出，涂于載玻片上，用95%酒精固定30min后晾干。涂片進行HE染色或瑞士染色，觀察動情周期。連續(xù)觀察2周，每日定時進行陰道涂片檢查，觀察動情周期。選擇連續(xù)有2個或2個以上正常動情周期（陰道涂片為大量無核角化細胞的大鼠），造模前一天每鼠肌注雌二醇0.1mg/(kg.d，大鼠)，使動物統(tǒng)一處于動情期。

建模方法I：

大鼠：腹腔注射麻醉后，將大鼠固定，腹部剪毛，消毒，并在無菌條件下開腹。在尿道口上約1cm處做垂直正中縱切口長約2-3cm進腹。大鼠子宮呈Y型，分離左側(cè)子宮，近端離左子宮角1cm處結扎，遠端離卵巢2cm處結扎，并結扎兩端間的子宮系膜血管，切除長約1.5-2.0cm的子宮段，立即放入盛有生理鹽水的培養(yǎng)皿中，修剪去子宮漿膜外的脂肪組織，縱向切開子宮腔，剝?nèi){膜層及肌層，將子宮內(nèi)膜片剪成5mm×5mm大小，移植到腹壁血管豐富處，注意其內(nèi)膜面與皮下組織貼合。逐層縫合傷口，待老鼠自然蘇醒后常規(guī)飼養(yǎng)。術后每天注射，共3天。

建模4周后，開腹檢查所有造模大鼠移植的子宮內(nèi)膜是否生長。若見移植物體積增大，形成表面被覆結締組織并有血管形成、內(nèi)有液體積聚的透明小囊泡，則證明造模成功。

建模方法II：

小鼠：動情期C57BL/6小鼠，脫頸椎法處死，仰臥位固定，腹部酒精消毒后，鋪上無菌治療洞巾，戴無菌手套，在恥骨聯(lián)合上方0.5cm處，沿正中線剖開腹腔。找到Y形子宮，小心分別牽出左、右側(cè)子宮，細心分離雙側(cè)子宮系膜。離斷宮角與卵巢，在Y形子宮分叉分別剪斷左側(cè)及右側(cè)子宮，放入裝有10mL37℃生理鹽水的無菌彎盤中，反復漂洗子宮表面的血跡，進一步分離剩余粘附的子宮系膜。將兩個子宮角分別放置于兩個無菌彎盤中，將它們直接剪成大小約1mm3的大小均等的碎片，并將它們懸浮于37℃生理鹽水中。將捐贈鼠的子宮按1:2的比例接種于受鼠腹腔，用0.3mL生理鹽水懸浮彎盤里的組織碎片。

隨機取動情期C57BL/6小鼠，取臍下0.5cm偏正中線0.5cm處的左下腹為進針點，將溶有子宮組織碎片的0.3mL生理鹽水用20號針頭連同子宮組織快碎片注入接受鼠的腹腔，后放置于鼠籠。直至第9天。隨機取動物，處死后，取異位內(nèi)膜，進行冰凍切片制備，HE染色觀察異位內(nèi)膜病灶是否有典型的內(nèi)膜腺體及間質(zhì)，提示復制動物模型是否成功。

分子實驗平臺：高效運作了qRT-PCR、Western blot、雙向電泳技術、分子克隆與質(zhì)粒構建、流式細胞儀檢測、免疫共沉淀、染色質(zhì)免疫共沉淀、RNA免疫沉淀、凝膠電泳遷移實驗、酶聯(lián)免疫吸附測定、外泌體抽提及鑒定等實驗。

基因組學平臺：可以完成甲基化檢測、基因芯片分析、高通量測序等實驗。

蛋白組學平臺：能實現(xiàn)LC-MS、ITRAQ、蛋白質(zhì)修飾分析等重點實驗項目。

病理學平臺：涉及免疫熒光染色、免疫組織化學染色、HE染色、特殊染色等實驗。

臨床前CRO服務：主要提供呼吸系統(tǒng)、神經(jīng)系統(tǒng)、免疫系統(tǒng)性疾病的藥效學評價服務，包括靶點驗證、體內(nèi)外模型的構建、藥物篩選、藥物分析、藥效性評價、藥代

動力學和藥理學研究以及院內(nèi)制劑研發(fā)等。

項目轉(zhuǎn)化服務：助力客戶進行方案設計、聯(lián)合課題申報、藥物項目引進和孵化，解決客戶對實驗技術平臺、專業(yè)人和融資的需求。